Дослідження калу є лабораторне дослідження , в якому стілець (фекалії) розглядається з метою виявлення кишкових паразитів. Це одна з найпростіших і найстаріших лабораторних методик, яку спочатку розробляв Антон Ван Левенгук у 18 столітті.
Антон Ван Левенгук, вважаючи батьком мікробіології, застосував "прямий" копропаразитоскопічний метод для спостереження за власним фекаліями і описав, що через роки було визначено як трофозоїти лямблій лямблій Джардії, найпростішого, що проникає в тонкий кишечник людини.
Форма для дорослих Ascaris lumbricoides (Джерело: Wikimedia Commons)
Паразитарні захворювання вражають мільйони людей у світі, особливо в бідних або слаборозвинених країнах, де існують погані санітарні умови, пов'язані з утилізацією екскрементів та споживанням забрудненої води.
Діагностика цих захворювань важлива для адекватного лікування, тому що копропаразитоскопічне обстеження є незамінним інструментом для цього. Це простий, швидкий і недорогий лабораторний тест.
Дослідження стільця включає декілька методик, які, крім того, що дозволяють безпосередньо візуалізувати та кількісно оцінювати яйця, трофозоїти, цисти або личинки, дозволяють ідентифікувати структури мікроорганізму і таким чином ідентифікувати паразита.
Методи, що застосовуються для копропаразитоскопічного дослідження, включають методи фарбування метиленовим синім, методи концентрації, методику Фауста, Річі, методи осідання та прямі, поодинокі або серійні дослідження.
Неплідне яйце Asumis lumbricoides. (Джерело: Центри контролю та профілактики захворювань через Wikimedia Commons).
Відбір проб
Для проведення цього дослідження пацієнтці потрібно взяти зразок свіжого стільця, який не забруднений сечею, водою, кров'ю (менструальною) або грунтом. Зразок повинен бути розміром з волоський горіх або, якщо він рідкий, він повинен бути не менше об'єму, що відповідає двом столовим ложкам.
Пацієнт не повинен був приймати паразитичні ліки принаймні три дні до взяття зразка або протягом періоду, визначеного лікарем. Також не слід застосовувати проносні препарати.
Зразки слід поміщати в суху ємність з широкою ротовою кришкою або спеціально розроблений одноразовий контейнер (доступний у кращій аптеці). Зразки слід помістити в прохолодне середовище, не слід зберігати в холодильнику більше 24 годин, не слід зберігати поблизу джерел тепла або заморожувати.
Коли вказане обстеження є серійним, потрібно, як мінімум, три зразки, які потрібно брати кожні 24 години або більше, як вказав лікар. Для цих випадків лабораторії зазвичай надають набір колб, що містять розчини з консервантами.
Коли пацієнт зауважує «черв’яка» в стільці, якщо це можливо, він повинен помістити його у закриту пляшку з водою та віднести до лабораторії разом із пляшкою зразка калу.
Флакони із зразками або з «глистами» повинні бути марковані та ідентифіковані з прізвищем пацієнта, його віком, статтю та датою та часом відбору проби.
Дуже важливо адекватно проінформувати пацієнта про всі ці аспекти взяття та обробки зразків, оскільки це залежить від того, чи можуть елементи, які можуть існувати у зразку, залишатися життєздатними для спостереження, ідентифікації та діагностики.
Техніки
Існують прямі випробування стільця та методи суспензії та концентрації проб, які використовуються багато разів, щоб уникнути помилкових негативів та спостерігати за чистими пробами чистіших. Деякі методи фарбування також використовуються для ідентифікації певних паразитів.
Прямі іспити
Безпосереднє дослідження стільця, використовуючи методику очікування краплі, полягає у розведенні зразка стільця фізіологічним розчином (0,9% NaCl) та поміщенні краплі цього розчину увігнутістю, що має спеціальний використовуваний предметний предмет. для цього.
Як тільки крапля поміщається на предметне скло, його накривають покривом і спостерігають під мікроскопом. Ця методика дозволяє нам спостерігати за яйцями та кістами, але також дозволяє спостерігати будь-який рухливий елемент, такий як джгутики, личинки, трофозоїти, інфузорії тощо.
Прийоми суспензії та концентрації
Методи суспензії використовують розчин, який щільніше, ніж спостережувані елементи, так що ці плавають на поверхні рідини і можуть збиратися, оскільки вони залишаються зосередженими в поверхневому шарі розчину.
Перевага цієї техніки є тим, що вона дозволяє мати досить чистий зразок сміття, оскільки вони, будучи більш щільними, залишаються на дні пляшки. Відносний недолік полягає в тому, що розчин стискається і деформує мікроорганізми за короткий час.
Ці методи не застосовуються для яєць гельмінтів і цестод, оскільки вони дуже важкі і не плавають у цих розчинах. Вони широко використовуються для спостереження найпростіших у їхній тропозойській формі або їх яєць та для спостереження за личинками, такими як Strongyloides stercoralis.
Інша методика, широко застосовувана через те, що вона не деформує мікроорганізми у зразку і є простою та недорогою, - це метод осадження формаліну.
Приклади методів концентрації включають методи Фауста та Річі.
Різні методи, що дозволяють мікроскопічно візуалізувати яйця, личинки та інші елементи різних кишкових паразитів у поєднанні з методами фарбування, дозволяють ідентифікувати та діагностувати ці захворювання.
Приклади
Далі описаний клінічний випадок і показано деякі зображення, які ілюструють корисність дослідження стільця для діагностики та оцінки переваг лікування.
Яйце трихурії трихурії (Джерело: CDC / доктор Мей Мелвін, люб’язно: Бібліотека зображень громадського здоров'я через Wikimedia Commons)
Хворий чоловіка 18 років приходить до кабінету лікаря для колікітного болю в животі, більш інтенсивного в області периумбікалу, нудоти та епізодів водянистої діареї.
Допитуючи пацієнта, лікар зазначив два важливі моменти: 1) пацієнт повідомив, що купався в озері в сільській місцевості, і 2) його вразило те, що його табурет плавав у туалеті. Оглянувши пацієнта, лікар підозрює наявність лямблій лямблії.
Життєвий цикл лямблій лямблії (Джерело: LadyofHats через Wikimedia Commons)
Цей найпростіший розміщується в тонкому кишечнику людини і перешкоджає всмоктуванню жирів, що створює дуже жирний стілець, який, як правило, плаває. Забруднення часто виникає від забрудненої води в озерах чи струмках у сільській місцевості або з погано підтримуваних басейнів чи гарячих ванн.
Трофозоїти лямблій лямблії (Джерело: Фото: Eva Nohýnková, кафедра тропічної медицини 1-го медичного факультету Карлового університету в Празі та лікарні Булівка, Чеська Республіка. Зображення на папері Марії Ліпольдової, Лабораторії молекулярної та клітинної імунології Інституту молекулярної ім. Генетика, Академія наук Чехії, Прага, Чехія через Wikimedia Commons)
Лікар призначає обстеження стільця, а результати підтверджують наявність лямблій лямблії. Після закінчення лікування показано ще одне дослідження стільця, яке підтверджує відсутність кіст або трофозоїтів лямблій лямблії.
Список літератури
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Поширеність стронгілоїдозу в Латинській Америці: систематичний огляд літератури. Епідеміологія та інфекція, 143 (3), 452-460.
- автор: Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Діагностика. Медична паразитологія (4а, 347).
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Корисність 2 копропаразитологічних методів та їх використання в терапії антигіардіазу. Кубинський журнал тропічної медицини, 55 (3), 174-178.
- Ціна, -DL (2017). Інструкція з процедури діагностики кишкових паразитів. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., & Orhan, R. (1984). Копро-паразитологічне дослідження на борців національної збірної. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.